摘要
核糖开关是一种结构RNA元件,通常位于信使RNA的5 '非翻译区。在基因表达调控过程中,配体结合到核糖开关的适体结构域,触发向下游表达平台的信号1,2,3..要完全理解这一机制的结构基础,就需要有研究结构随时间变化的能力4.本文采用飞秒x射线自由电子激光(XFEL)脉冲5,6从如此小的晶体中获得结构测量,使配体的扩散可以在衍射之前被定时启动反应。我们通过在反应过程中确定腺嘌呤核糖开关适体结构域的四种结构来证明这种方法,包括两个未结合的载脂蛋白结构,一个配体结合的中间体,以及最终的配体结合构象。这些结构支持至少有四种状态的反应机制模型,并说明了信号传输的结构基础。两个载脂蛋白构象体的三向结和P1开关螺旋与配体结合构象明显不同。我们用10秒延迟的时间分辨晶体学测量捕捉到了中间体的结构,以及适应配体的结合袋的变化。经过至少10分钟的延迟,RNA分子完全转化为配体结合状态,在这种状态下,大量的构象变化导致空间基团的转化。如此显著的变化在crystallo强调微观和纳米晶体在这些和类似的时间分辨衍射研究中可能提供的重要机会。总之,这些结果证明了“混合-注入”时间分辨系列晶体学在研究生物大分子和配体之间的重要生物化学相互作用方面的潜力,包括那些涉及大构象变化的相互作用。
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确认
这项研究的一部分是在直线加速器相干光源进行的,这是斯坦福大学代表美国能源部基础能源科学办公室运营的国家用户设施。CXI仪器是由美国能源部基础能源科学办公室资助的LCLS超快科学仪器(LUSI)项目资助的。直线加速器相干光源(LCLS)的使用,SLAC国家加速器实验室,由美国能源部,科学办公室,基础能源科学办公室支持。de - ac02 - 76 sf00515。我们感谢J. Strathern和M. Dunne的支持和S. Wakatsuki的讨论。这项工作得到了NSF-STC“BioXFEL”(NSF-1231306), NCI, CIT, NHLBI的NIH内部研究计划,以及美国能源部,生物和环境研究办公室合同DE-AC02-06CH11357,欧洲研究委员会,“阿秒x射线科学前沿:成像和光谱学(AXSIS)”,ERC-2013-SyG 609920和BMBF通过项目05K16GU1的部分支持。
作者信息
作者及隶属关系
贡献
J.R.S.和y - x.w设计实验;Y.L.和P.Y.提供了RNA样本;J.R.S.和y.l将RNA结晶化;Y.L jr。,Y.R.B D.R.W, C.E.C, J.D.C, G.N,部件,N.A.Z, M.O.W,原产,j.k., T.D.G, M.S.H, mit获得,马丁和Y.-X.W.收集自解压数据;M.O.W, d.o., J.K.和H.N.C.设计了混合装置;Y.R.B jr。,D.R.W T.A.W, A.B。R.A.T, N.A.Z, X.J. T.D.G.处理和分析了自解压数据;j.r.s.、y.r.b.、m.s.、X.J.和y.x w解释了SFX数据;N.A.Z, a.b., m.s.h., s.b., m.l., u.w., p.f., H.N.C.和J.C.H.S.贡献了XFEL的专业知识和支持;y.r.b.、l.f.、X.Z、C.D.S.和y.y.x w收集、分析和解释SAXS数据;j.r.s.、c.e.c.、K.T.、y.x w表征样品; M.D. and Y.L. performed mass spectroscopy; S.G.T. and Y.L. performed ITC and fluorescence titration; S.P. and Y.L. collected and analysed binding data; X.Z. and S.A.W. modelled ligand binding kinetics; X.Z., S.P., S.A.W. and Y.-X.W. interpreted kinetic data; D.E.D., A.F.D. and J.Z. contributed discussions; J.R.S. and Y.-X.W. drafted the manuscript and all authors contributed to the revision.
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道德声明
相互竞争的利益
作者声明没有相互竞争的经济利益。
额外的信息
审核人信息自然感谢J. Hajdu, R. Micura和其他匿名审稿人对本工作的同行评审所作的贡献。
扩展的数据图形和表格
图1 RNA晶体的表征。
apo-rA71微晶体采用方法中所述的分批结晶方法生长。使用SONICC成像仪(Formulatrix)对每个样品(0.5-1.0 μl)进行了三种不同的成像方法:可见光(一个);UV-TPEF (b);手性晶体的二阶非线性成像(c).d,晶体样品在交叉偏振光下使用立体显微镜(蔡司)观察。e没有交叉极化,晶体几乎无法观测到。f,通过粉末x射线衍射(APS束线19-ID)测量晶体样品的相对质量,最大可观测分辨率约为6 Å。分辨率环(红色)对应6.8 Å。
图2小角度x射线散射对溶液中rA71的表征。
一个, apo态(黑色)和束缚态(红色)rA71溶液x射线散射曲线的Kratky图比较。b, apo1和apo2构象的小角度x射线散射(SAXS)剖面与rA71在apo(红色)状态下的溶液x射线散射曲线的反向计算图。c,实验SAXS曲线以红色表示,带有红色误差条,并与使用双元集成计算从128个结构反求的SAXS曲线叠加。两种构象(apo2:apo1)的比例约为0.9:0.1,与实验数据的拟合最好χ2数值范围大约在0.1到0.3之间。
扩展数据图3为了容纳配体,三通结进行了显著的结构重排,压缩了主槽。
一个,在apo1(蓝色),apo2(青色,)和配体结合(品红,PDB代码4TZX)结构中观察到的三向结。几乎所有的三向结残基在配体结合时都发生了相当大的构象变化。最值得注意的是铰链(U22, A23)和闩锁(U48, U49, U51)区域的“摆动”残基,它们在载脂蛋白构象体中的原子位置相对于配体结合的构象体相差17 Å。b,在缺少配体的情况下,铰链(描述为白色表面和棒模型)和闩锁区域的一致运动导致螺旋P1和P3之间形成的主要沟槽显著变窄,分别为apo1、apo2和配体结合构象体9.4 Å、10.0 Å和16.6 Å。测量了U71和A19的磷原子之间的主要沟槽距离(或apo1的情况下的U20,由于寄存器的差异)。
图4 rA71核开关的多级配体结合动力学。
通过将U48替换为荧光碱基类似物2-氨基嘌呤(2AP;称为rA71-U482AP)。配体诱导的结合袋重组使2AP荧光发射强度增加。通过部分RNase酶切判断,2AP取代不会改变载脂蛋白rA71核糖开关的二级结构。一个, rA71-U482AP与腺嘌呤产率的平衡滴定法Kd= 5 μM(黑色)。一个类似的Kd数值由动力学过程曲线的端点(红色符号)和在线探测实验获得。这个值大约是腺嘌呤与未修饰的核糖开关结合的10倍,可能是因为2AP在载脂蛋白结构中形成了更稳定的碱基堆叠相互作用。误差条表示两个或多个独立试验的平均值的标准偏差。b配体结合动力学符合四态机制。0.5 - 1600 μM腺嘌呤与0.5 μM rA71-U482AP的结合通过止流荧光(1.8 ms死时间)测定,如方法所述。腺嘌呤相关的表观速率常数,λ快而且λ慢,由个体轨迹拟合得到双相速率方程∆F=一个快(1−exp(−λ快t)) + a慢(1−exp(−λ慢t)),其中A为腺嘌呤浓度。错误条如下一个.的非线性增长λ快(填充符号)腺嘌呤浓度超过配体浓度的整个范围表明结合机制中存在一种或中间产物。配体无关相,λ慢(开放符号),导致在50 μM腺嘌呤以上的双相轨迹,并解释为结合正常和结合不正常形式的核糖开关之间的缓慢交换。c,腺嘌呤结合的表观双分子速率常数比扩散慢,由λ快与[腺嘌呤]相比,在伪一级条件(0.5-25 μM腺嘌呤)下,配体与有效(开放)核糖开关的结合是限速的。10mm MgCl2(符号),k在= 1.9 × 105米−1年代−1而且k从= 1.7秒−1.1.25 mM MgCl2(开放的符号),k在= 5.2 × 104米−1年代−1而且k从= 2.1秒−1.误差条是一个与n3个独立试验。d,e,同一组简化的实验数据图2 c是否全局拟合于更简单的三态动力学机制,如补充讨论.这些模型不能描述溶液结合动力学在整个范围的配体浓度测试。因此,式(1)中的四态模型是能够描述数据的最简单机制。我们不排除这种可能性,即核糖开关对额外的载脂蛋白状态和中间复合物进行采样,这可能有助于开关机制的稳健性。d,只有一个载脂蛋白态的三态机制。拟合得到的参数为:k在= 0.28 μm−1年代−1,k从= 37秒−1,kf= 103秒−1,kr= 5.1秒−1,sc= 2.03。错(k,sc) = 0.053,其中sc是缩放值和速率常数(k)通过最小化卡方误差函数Err(k,sc),描述计算曲线与实验数据集之间的差异(补充讨论).e,具有两个载脂蛋白态和无结合中间体的三态机制。参数:k人事处= 2.5秒−1,kcl= 0.58 s−1,k在= 0.16 μm−1年代−1,k从= 0.79 s−1, sc = 2.44。错(k,sc) = 0.056。
图5晶体中IB浓度的时间过程模拟及载脂蛋白、IB和束缚结构的单位细胞尺寸比较。
一个,模拟了晶体中IB积聚的时间过程以及配体、apo2和束缚态(B)浓度的变化。参见方法。b,c、载波态、IB态和束缚态晶体的空间群和单位细胞尺寸。在与腺嘌呤配体混合至少10分钟后,晶体中的结构从载脂蛋白转变为结合态。与配体混合10 s后,晶格保持不变。
扩展数据图6确定IB构象的结构。
一个,为了首先验证IB状态相对于apo2是否有变化,针对10-s-mix数据对apo2结构进行了细化;2Fo−Fc(1σ,蓝色)及Fo−Fc(3σ(绿色)电子密度图。这两张地图都指出了U48和A21的替代位置。b, apo2状态的U48和A21的占有率设置为0.5,并以同样的方式进行细化。的Fo−Fc图(3σ(绿色)清楚地显示了U48的替代构象(IB),在原来的U48位置上有一团密度,与腺嘌呤配体相对应。A21的替代构象不太明显,与相邻的铰链残基(U22和A23)一起部分无序。c,保持A21的占用率为0.5,对结构进行细化,省略U48。的Fo−Fc图(3σ(绿色)再次支持U48、A21和腺嘌呤配体密度的可选构型。d,腺嘌呤配体的IB状态的最终细化结构(红色),以及在0.5占用时模拟的U48和A21的替代构象,如图2所示Fo−Fc电子密度图(1σ,蓝色)。
扩展数据图7Fo−Fc和2Fo−Fc电子密度图和10-s-mix数据的集成细化模型。
一个,加权Fo−Fc电子密度差图为绿色(3σ)和红色(−3 .σ),计算采用载脂蛋白结构(apo2,青色;Apo1,蓝色)和10-s-mix数据中的结构因子。孤立的峰很可能对应于骨干磷酸盐,表明构象态的混合,主要位于apo2结构的三向交界处及其周围。b, 2Fo−Fc电子密度图(1σ(左)和10-s-mix结构的“apo1样”分子的时间平均分子动力学集成优化模型(右)。c, apo1(蓝色)与10-s-mix结构的apo1样分子(橙色)的叠加,表明apo1与配体混合10 s后结构没有变化。
补充信息
补充讨论
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斯塔格诺,J,刘勇,班达里,Y。et al。用混合-注入XFEL系列晶体学研究核糖开关RNA反应态的结构。自然541, 242-246(2017)。https://doi.org/10.1038/nature20599
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DOI:https://doi.org/10.1038/nature20599
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在欧洲XFEL收集的数百万张连续飞秒晶体学数据集
科学数据(2022)
连续飞秒晶体学
自然评论方法引物(2022)
荧光适体Squash广泛地重新利用腺嘌呤核糖开关折叠
自然化学生物学(2022)
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